Для постановки ПЦР, ИФА, титрования критически важным является верная работа дозатора.

🔰Сам дозатор должен быть поверен (№102-ФЗ “Об обеспечении единства измерений”), но и пользоваться им нужно уметь.

Для точного дозирования рекомендуется:
🔵одинаковая температура сменных наконечников, дозатора и дозируемой жидкости
🔵плотно надевать наконечник на посадочный конус
🔵менять наконечник после каждого цикла дозирования (при смене жидкости)
🔵держать дозатор вертикально при наборе жидкости
🔵погружать наконечник в жидкость на 2-3 мм (не более 1 см)
🔵смочить сменный наконечник перед началом дозирования (набрать-сбросить жидкость 3-5 раз)
🔵равномерно нажимать и отпускать плунжер
🔵прикасаться к стенке сосуда с жидкостью для удаления ее излишков
🔵касаться внутренней стенки емкости при сбрасывании жидкости

#дозирование

Поршневые дозаторы могут быть:
⏩с фиксированным объемом
⏩с переменным объемом
и имеют несколько положений ⬆️

🔰Перед началом дозирования убедитесь, что:
- плунжер повернут до щелчка
- цифры на индикаторе полностью видны
- выбранный объем в рамках диапазона дозирования

🔰Помните, на точность дозирования влияет:
- температура (окружающей среды, жидкости, наконечника)
- влажность воздуха (важно для малых объемов)
- атмосферное давление
- состояние дозатора и качество наконечников
- плотность дозируемой жидкости
- угол дозирования

#дозирование

При дозировании стоит учитывать тип жидкости, чтобы выбрать подходящий способ дозирования.

Например, прямое дозирование если:
✅водный раствор (сходный с водой)
✅дозирование >10 мкл жидкости

🚫вязкие растворы (в т.ч. кровь)
🚫дозирование 10 мкл и менее

🔰Техника:
установить объем и наконечник

а) нажать на плунжер до 1 упора (создание вакуума)
опустить наконечник в жидкость

б) плавно опустить плунжер (набор жидкости)
извлечь наконечник из жидкости

в) перейти в емкость
плавно нажать на плунжер до 1 упора (сброс жидкости)
после паузы нажать кнопку до 2 упора (продувка)

г) отпустить плунжер

#дозирование

При дозировании стоит учитывать тип жидкости, чтобы выбрать подходящий способ дозирования.

Например, обратное дозирование если:
✅ вязкие растворы (в т.ч. кровь)
✅ пенящиеся жидкости
✅ дозирование 10 мкл и менее

🔰Техника:
установить объем и наконечник

а) нажать на плунжер до 2 упора (создание вакуума)
опустить наконечник в жидкость

б) плавно отпустить плунжер (набор жидкости)
извлечь наконечник из жидкости

в) перейти в емкость
плавно нажать на плунжер до 1 упора (сброс, в наконечнике должна остаться часть жидкости)

г) перейти в емкость отходов
нажать на плунжер до 2 упора (сбросить оставшуюся жидкость)

#дозирование

Читайте ⏩
мануал по правилам дозирования от производителя пипеток.

#теория #дозирование

В иммуногематологии, изосерологии часто нужно определить титр (или концентрацию). Для этого используется техника последовательного разведения.

Классное объяснение ⏩ Как сделать последовательное разведение

#дозирование

Интерактивный курс Введение в пипетирование от ARUP Laboratories.

🔰О составных частях дозатора, технике пипетирования с тестами для проверки

#теория #дозирование

Неожиданно низкие концентрации такролимуса

Наибольший процент ошибок случается на преаналитическом этапе исследований, но и на аналитическом этапе надо быть настороже.

В статье ⬆️проводят поиск причины неожиданно низких результатов такролимуса в одной постановочной серии.

При этом:
🔶результат внутреннего КК в норме;
🔶ожидаемые результаты для тропонина I (определялся на этом же анализаторе);
🔶отсутствуют сигналы/флаги анализатора;
🔶техническое обслуживание анализатора проводилось по графику;

Выяснилось, что у одного из реагентов (дилюент- вода) истек срок годности.
Но не будем кидать камни в лабу 😃

На флаконе было две этикетки от завода производителя. Согласно одной - срок годности истек, но поверх нее была другая этикетка с актуальным сроком годности.

✅После замены реагента на “свежий” и повторном измерении такролимуса - результаты стали клинически ожидаемыми.

#case

Итак, tips and tricks для приготовления идеального мазка

🔺хорошо перемешанная ЭДТА-кровь комнатной t
🔺чистое предметное стекло
🔺держи шпатель/стекло за края, без давления по центру
🔺начинай мазок после распределения капли крови по краю шпателя
🔺не путай давление с движением
🔺не отрывый шпатель от предметного стекла пока мазок не доделан
🔺не забудь подписать стекло (карандаш, несмываемый маркер)
🔺суши без спешки
🔺покажи приготовленный мазок самому требовательному доктору в лабе 🤓

🧪Давайте тогда разберемся, какой он - качественный мазок

✅Занимает примерно 2/3 длины предметного стекла.
✅Боковые края мазка видны.
✅Мазок гладкий, без неровностей, дырок и полос.
✅Через толщину мазка можно прочитать текст.
✅“Метёлка” закругленная по краю, не заостренной формы.
✅Если поднять предметное стекло на свет, край мазка должен иметь вид «радуги».

#мазок

Мазок приготовлен, окрашен и теперь самое интересное - нужно просмотреть его.

🚫Нет необходимости просмотра или подсчета лейкоформулы для всех мазков крови, которые поступили сегодня в лабораторию, и крови сотрудников за одно.

Но особенно важно просмотреть мазок при 3 патологиях.

❗️Это гемолитические анемии, тромбоцитопении и white blood cell disorders (подозрения на гемобластозы).

Оптимальное места для просмотра лучше выбирать на увеличении х40, когда мазок покрыт тооонким слоем иммерсионного масла.

A — слишком толстое место 🚫
Скопления эритроцитов, они маленькие и темные.

* — оптимальная толщина ✅
Эритроциты с центральным просветлением, лежат отдельно друг от друга в один слой.

B — слишком тонкое место 🚫
Эритроциты не двояковогнутые, между ними крупные просветы как “брусчатка”

#мазок

🔰Но даже в правильном месте мазка вид эритроцитов может быть НЕнормальным

Например,
🟠в виде “монетных столбиков” при миеломной болезни, или увеличении фибриногена или других белков крови.
🟠агглютинация, скопления эритроцитов при холодовой агглютинации
🟠округлые пустоты (видны невооруженным глазом на мазке) при хилезной плазме у пациентов с гипертриглицеридемией.

#мазок

Результат лейкоцитарной формулы выдается на основании подсчета под иммерсией 200 лейкоцитов в окрашенном мазке (в %).

Для корректного подсчета есть несколько схем движения по мазку:
✅по четырехпольному методу Меандре (а)
✅по способу Филипченко (б)
✅по середине мазка (в)

Такой путь подсчета важен, тк в мазке лейкоциты распределены неравномерно:

🟩“тяжелые” клетки (базофилы, моноциты) - по краю мазка.
🟢“легкие” (лимфоциты) - в центре.

#мазок

Подробнее про схемы подсчета лейкоцитарной формулы ⬇️

(а) Четырехпольный метод
▶️с каждой стороны мазка (на 4 участках) подсчитывают по 25 лейкоцитов (всего 100 клеток).
▶️от края мазка отступают 3-4 п/з.
▶️затем углубляются на 3-4 п/з, продвигаются на 2-3 поля вдоль мазка и возвращаются к его краю.

(б) Трехпольный метод
🔶лейкоциты подсчитывают на 3 участках, расположенных поперек мазка (от одного края до другого).
🔶в начале мазка подсчитывают 35 клеток, в середине — 30 и в конце — 35.

(в) Однопольный метод
🔺в средней части мазка, проходя поперек от одного его края до другого и обратно, подсчитывают 100 лейкоцитов.

#мазок #преаналитика

❓Что общего у карты метро, вакуумных пробирок и многожильных проводов?
Верно, они разноцветные

Использование цветового кодирования старо как мир, и очень эффективно.
В лаборатории вот, для более легкой и быстрой идентификации антикоагулянта при выборе пробирок (в соответствии с ГОСТ ISO 6710-2011).

На этой неделе - про пробирки и все с ними связанное.

#преаналитика

Продолжим викториной по типам биоматериала и пробиркам ⬇️